蛍光顕微鏡法



1. 物質の蛍光


 ある物質が特定の波長の光を吸収して,それより長波長の光を放射する現象を蛍光と呼びます.このような蛍光を発する物質(分子)は,様々な種類のものが天然に存在したり,合成されたりしています.蛍光分子は,その物質に特有な波長の光の吸収によって,基底状態にあった電子がエネルギの高い励起状態にフェムト秒で遷移します.そしておよそピコ秒後,分子内緩和(分子内振動を経て熱へ)が起こり,一段低い励起状態に遷移します.さらにナノ秒後,電子が基底状態に戻るとき,発光します(蛍光).蛍光分子は紫外光から赤外光にいたるまで様々な種類があり,用途に応じて選択されます.主に分子運動のプローブとして用いられ,標的となる高分子の濃度,結合解離,構造変化,配向,反応速度,揺動の速さなどの情報を得ることができます.フェムト秒やピコ秒のパルス光による分光法では,分子揺動のような非常に速い運動を測定できます.定常光による分光法では,濃度や分子間相互作用など測定ができます.それとは別に顕微鏡法において,高分子のイメージングの手段として,蛍光分子が利用されています.




2. 蛍光標識


 標識を目的とした様々な蛍光分子が製造されています.標的となる分子やその測定に応じて,蛍光分子を選択します.この蛍光分子は,蛍光と発する部分と標的に反応する官能基から構成されます.選択基準として,励起波長,蛍光波長,親水性,疎水性,大きさ,官能基などを考慮します.例えば,タンパク質を蛍光標識する場合には,そのリシン側鎖にあるアミノ基,またはシステイン側鎖のチオールに反応する官能基を有する蛍光分子が用いられます.アミノ基に反応し共有結合を形成するものとして,NCS基(isothiocyanate)やNHS基(N- Hydroxy succinimide ester)などがあります.また,チオール基に反応するものとして,マレイミド基(maleimide)があります.このような官能基によってタンパク質の側鎖に蛍光分子を直接に共有結合させることができます.蛍光イメージングでの利用には,可視光領域の蛍光をもつものが適しています.例えば,フルオレセイン(fluorescein)は黄緑色,ローダミン(rhodamine)はオレンジ色の蛍光をもちます.

FITC (Fluorescein isothiocyanate):分子量389.38,励起波長 494 nm,蛍光波長 520 nm,1級アミノ基に反応


TRITC (Tetramethylrhodamine isothiocyanate):分子量478.97,励起波長 541 nm,蛍光波長 572 nm,1級アミノ基に反応


Cy3-NHS (Cy3 N- Hydroxy succinimide ester):分子量765.95,励起波長 550 nm,蛍光波長 570 nm,1級アミノ基に反応


IC3-OSu (N-Ethyl-N'-[5-( N''-succinimidyloxycarbonyl)pentyl]indocarbocyanine):分子量604.18,励起波長 550 nm,蛍光波長 570 nm,1級アミノ基に反応


Cy3-maleimide:励起波長 550 nm,蛍光波長 570 nm,SH基に反応


 蛍光分子をタンパク質に直接的に結合させる方法だけでなく,抗体などを用いて間接的に結合させる方法も使われます.標的となるタンパク質に対する抗体を蛍光分子で予め標識した後,そのタンパク質と標識抗体を混合することで,抗体抗原反応によって選択的にタンパク質を検出することができます.しかしながら,抗体の結合は,標的タンパク質の性質を著しく損なうため,注意が必要です.その他,抗体以外に特定のタンパク質に強く結合するペプチドが存在する場合があります.例えば,細胞骨格のアクチン繊維には,ファロイジンと呼ばれる毒キノコ由来のペプチドが選択的に強く結合することが知られています.このファロイジンを蛍光標識したものをアクチン繊維と混合することで,性質を著しく変えることなくアクチン繊維を均一に蛍光染色することができます.

TRITC-labeled phalloidin (Rhodamine-phalloidin)


Ref: Oda, T. et al., Biophysical J. Vol. 88 (2005)


3. 蛍光の分光


 蛍光分子によって標識された高分子を蛍光顕微鏡下で観察することができます.そのためには,励起光とそれによって発光した蛍光のそれぞれの光を分離しなければなりません.一般的に,光源として,水銀ランプやキセノンランプを用います(レーザー光も有効).その幅広いスペクトルともつ光から励起光となる波長の光だけを透過する干渉フィルターを使って,励起光を選択します.励起光は,ダイクロイックミラーと呼ばれるミラーで反射され,蛍光試料に照射されます.このダイクロイックミラーは特定の波長以下の光を反射し,それより長波長の光を透過するミラーです.励起された蛍光試料から放射された蛍光は,ダイクロイックミラーを透過した後,吸収フィルターで余分な波長の光がカットされます.このような経路で得られた光を最終的に検出します.フィルターやミラーは,使用する蛍光分子の特性に合わせて選択する必要があります,さらに,それらは特定の波長のみを完全に透過,反射,吸収するのではなく,ある程度波長幅をもっていることから,それぞれのフィルターやミラーの波長帯を適切に組み合わせないと,よい映像は得られません.レーザーを光源に用いた場合には,その性質から単色光であるので,フィルター類の選択は容易かもしれません.




4. 蛍光イメージング


 透過光を用いた顕微鏡では,十分な照明光が試料を透過するときに,光が吸収されるか減衰することで像を得るのに対して,蛍光顕微鏡では,光のないところで,試料から照射される光によって像を得るものです.この点,透過光と用いた観察と蛍光を用いた観察では,原理が大きく異なり,その利用方法や利点も注意する必要があります.蛍光観察のためには,蛍光照明用のユニットを装備した専用の顕微鏡を使用します.下図では,倒立型蛍光顕微鏡(Inverted Fluorescence Microscope)を示しています.水銀ランプ(Mercury Lamp)からの光は励起フィルター(Barrier Filter1)で励起光だけ選択され,ダイクロイックミラー(dichroic Mirror)を介して反射された後,対物レンズ(Objective Lens)を通して試料(Spacimen)に照射されます.対物レンズはなるべく開口数(NA)の大きな明るいレンズを使用します.試料中の蛍光分子が励起され,蛍光を放射します.その光は対物レンズを通って,ダイクロイックミラーを透過し,吸収フィルター(Barrier Filter2)で必要な光だけ選択されます.透過した蛍光像はリレーレンズ(Relay lens)を介して高感度カメラ(High-sensitive Camara)で結像されます.一般的に蛍光像はとても弱い光(量が少ない)であるため,量子効率の高いカメラや,積算や倍増機能を有するカメラが使用されます.カメラから出力されたビデオ信号をタイムカウンター(Time Counter)を通すことで,その画像信号に正確に時間を刻みます.その信号をビデオレコーダー(VCR)で記録しながら,モニター(Monitor)に映し観察します.または,コンピューター(Computer)のメモリにビデオ取り込みボード(Image Grabber Unit)を介してデジタルデータとして記録します.この映像は最大640×480ピクセル,時間間隔1/30秒で記録されます.このデータから,試料の形状や運動を計測することができます.



5. 実験の流れ



6. In vitro motility assay



6. アクチンフィラメントの滑り運動計測



一定時間間隔でアクチンフィラメント先端の座標を取得し,移動変位から速度を求める.この滑り速度はフィラメント長に依存しない.
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